CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)
时间:2019-09-25 09:00 至 2019-09-26 17:00
地点:杭州
- 参会报名
- 会议通知
- 会议日程
- 会议嘉宾
- 参会指南
-
手机下单
(点击可切换)
CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班) 已截止报名会议时间: 2019-09-25 09:00至 2019-09-26 17:00结束 会议规模:50人 主办单位: 北京微旋基因技术有限公司
|
会议通知
会议内容 主办方介绍
CRISPR/Cas9基因编辑技术培训班2019(9月杭州班)宣传图
邀请函
尊敬的 :您好!
CRISPR是生物科学领域的颠覆性技术,使用高效、迅速且简单,在生物医学研究领域引起一场巨变,并因此席卷全球实验室。研究人员利用它改造人类基因以消除疾病,创造生命力更加顽强的植物,并且消灭病原体。《Science》2017年度突破、《Nature》2017年度人物均授予了CRISPR相关技术的突破,CRISPR技术再一次成为生命科学的焦点。
随着近几年的发展,研究者开发出越来越多基于CRISPR的新型基因编辑技术,例如CRISPRa/i,基因定位,表观遗传修饰,单碱基基因编辑系统(BE2,BE3,ABE等),CRISPR/C2c2基因突变检测系统等。CRISPR/Cas9系统的应用更加便捷、高效,也更广泛,目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼、小鼠以及细菌等基因组精确修饰,成为科研人员的强大工具,基于CRISPR临床实验已经取得初步成功。
为了让更多的科研人员及时全面的掌握CRISPR最新技术,并应用的相应的领域研究中。特于2019年9月25日至26日在全季酒店(杭州文三路店)举办CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班。免费获得一份CRISPR/Cas9敲除质粒载体(可以用于哺乳动物、植物、真菌、细菌、斑马鱼、线虫等,共60种)。免费赠送sgRNA离线设计软件(有基因组DNA序列即可设计!学员需自带电脑)。
举办时间:
2019年9月25日至26日
举办地点
全季酒店(浙江省杭州市西湖区文三路121号全季酒店杭州文三路店)
参加对象
从事医学、生命科学、农学等领域科研工作者和高校教师及研究生。
授课方式
理论讲授和实际演练紧密结合。
承办单位:
北京微旋基因技术有限公司
CRISPR 质 粒 清 单 | |||
Plant | #50588 | pHSN401 | CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance |
#63142 | pRGEB32 | (Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation. | |
#51295 | pRGEB31 | (Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation. | |
Insect | #49330 | pAc-sgRNA-Cas9 | Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells |
C.elegans | #47549 | pDD162 | Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome. |
Yeast | #43804 | p415 | Human Optimized S. pyogenes Cas9 |
Bateria | #42875 | pCRISPR | A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence |
#61737 | pCRISPomyces-2 | Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA | |
Zebrafish | #47929 | pCS2-nCas9n | expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish |
Mammalian | #52970 | FokI-dCas9 | Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells |
#61591 | PX601 | A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA. | |
#42230 | PX330 | A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid. | |
#48138 | PX458 | Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA | |
#48139 | PX459 | Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0) | |
#48140 | PX461 | Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA | |
#48141 | PX462 | Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA | |
#50661 | pCW-Cas9 | Inducible lentiviral expression of SpCas9 | |
#52963 | LentiGuide-puro-Vector | Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone. | |
#52962 | lentiCas9-Blast | Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone. | |
#69982 | pY010 | Expresses humanized AsCpf1 | |
#19319 | pLJM1-EGFP | (Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin | |
#12260 | psPAX2 | Lentivirus package plasmids | |
#61427 | lenti sgRNA(MS2)_zeo | (Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences. | |
#61426 | lenti MS2-P65-HSF1_Hygro | lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE) | |
#61425 | lenti dCAS-VP64_Blast | 3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE) | |
#71814 | eSpCas9(1.1) | Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid. | |
#47327 | pET-28b-Cas9-His | For in vitro expression and purification of Cas9 protein | |
#62934 | pET-NLS-Cas9-6xHis | Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells | |
86840 | pJH373 | mamalian expression of AcrIIA2 | |
84750 | Lenti-AsCpf1-Blast | Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone. | |
84752 | Lenti_gRNA-Puro | (Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter | |
79145 | pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA | All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells | |
84745 | pY30 | Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide | |
84743 | pY094 | Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide | |
84741 | pY026 | Expresses huAsCpf1 and crRNA guide | |
79152 | pC003 | LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning | |
79150 | pC001 | Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli | |
64324 | pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry | Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide | |
64222 | pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6 | Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A | |
64218 | pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B | Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A | |
64323 | pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP | Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide | |
51023 | pSLQ1658-dCas9-EGFP | Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system) | |
64108 | pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry | Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells |
查看更多
公司主营业务为通过基因检测、质谱检测、生物信息分析等手段,为医疗机构、科研机构、企事业单位等提供基因组学类的检测和研究服务。微旋基因秉承“基因科技造福人类”的愿景,以推动生命科学研究进展、生命大数据应用和提高全球医疗健康水平为出发点,基于基因领域研究成果及精准检测技术在民生健康方面的应用,致力于加速科技创新,减少出生缺陷,加强肿瘤防控,抑制重大疾病对人类的危害,实现精准治愈感染,全面助力精准医学。 公司主要服务于国内外的科研院校、研究所、独立医学检验实验室、制药公司等机构, 以及国内外的各级医院、体检机构等医疗卫生机构、公司客户和大众客户。目前,公司业务已经覆盖了上百家医疗机构,其中三甲医院30多家一直与我们保持着量好的业务和科研合作,与各个地区合作的海内外医疗和科研机构超过100家。 公司致力于基因技术的临床应用,细胞治疗和药物研发,汇聚了来自国内外医学、分子生物学、基因组学、生物信息学、计算机科学等各个领域的专业技术人才。
会议日程 (最终日程以会议现场为准)
课程安排:
日期 | 时间 | 培训内容 | 授课老师 |
9月24日 | 15:00-19:00 | 培训报到 | 刘刚 博士 |
9月25日 | 9:00-11:30 | 理论讲解: 一、基因编辑技术简介(三代基因编辑工具) 1. ZFN 2.TALEN 3.CRISPR 二、CRISPR/Cas9基因编辑技术原理 1. CRISPR/Cas9发现历史 2. CRISPR/Cas9作用机制解析 3. CRISPR/Cas9系统改造策略 | |
13:00-17:00 | 理论讲解: 一、sgRNA在线设计构建实战演练(1.靶基因序列查找2.sgRNA在线设计合成) 二、CRISPR/Cas9转染策略: 1.生物转染(慢病毒、腺相关病毒等) 2.物理转染 (电转核酸/RNP、显微注射、基因枪) 3.化学转染 (脂质体、阳离子聚合物) 三、CRISPR/Cas9 sgRNA效率检测,脱靶检测及解决策略 1、高保真Cas9(espCas9、Hifi-Cas9、Cluster1-Cas9) | ||
9月26日 | 9:00-11:30 | 理论讲解: 一、CRISPR技术应用解析 1.基因敲除(单基因敲除、多基因敲除、大片段删除、多靶点sgRNA载体构建策略) 2.基因敲入实战演练(gRNA选择、同源臂设计、导入,长片段导入策略/提高基因敲入效率策略,PITCh、HITI) 3.CRISPR在转录调控中的应用(转录激活、转录抑制系统) 4.CRISPR靶基因标记定位 二、CRISPR案例解析 1.基因敲除在小鼠模型构建、植物、细胞、细菌、真菌等中的应用案例解析 2.基于CRISPR的全基因组基因敲除高通量筛选策略 3.基于CRISPR的全基因组转录激活/抑制高通量筛选策略 三、CRISPR/Cas9与基因沉默技术(siRNA、shRNA)系统比较。 | |
13:00-17:00 | 理论讲解: 一、单碱基基因编辑技术简介及在基因治疗中的应用 1.HF2-BE2 2.BE3系统 3.ABE系统4.单碱基基因编辑脱靶克服。 二、基因CRISPR的基因检测系统 1、CRISPR-Cpf1系统介绍(DETECTR) 2、CRISPR-C2c2系统介绍(SHERLOCK) 三、CRISPR/Cas9系统在肿瘤和遗传病治疗中应用解析 1、CRISPR结合免疫检查点抑制剂治疗肿瘤 2、单基因遗传病治疗(DMD、先天性黑朦、地中海贫血等) 3、CRISPR治疗HIV-基因编辑婴儿解析 |
查看更多
会议嘉宾 (最终出席嘉宾以会议现场为准)
刘刚博士
2008年博士毕业于中国科学院上海生命科学研究院,从事肿瘤干细胞,细胞衰老,肿瘤转移等细胞作用网络和通路的研究,并作为骨干研究人员参加了973计划项目、国家自然科学基金重点项目、在香港中文大学做为作为Postdoc和Research fellow,从事研究工作。先后Nature Genetics,cell research、PLOS one等期刊发表论文十余篇。
查看更多
参会指南
会议门票
收费标准
注册费: 2800元/人,2019年9月10号之前汇款报名可以优惠至:2600元/人。包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费;免费提供工作午餐,可协助安排住宿,住宿费用自理。
推荐住宿地点:全季酒店,299元/标间,319元/大床。
查看更多
温馨提示
酒店与住宿:
为防止极端情况下活动延期或取消,建议“异地客户”与活动家客服确认参会信息后,再安排出行与住宿。
退款规则:
活动各项资源需提前采购,购票后不支持退款,可以换人参加。
您可能还会关注
-
2025(第七届) 世界细胞治疗与再生医学大会暨展览会
2025-04-16 北京
-
2024CBIIC第九届医药创新与投资大会
2024-11-30 广州
-
2025 MAH&DDS制剂合作大会(杭州站)
2025-02-20 杭州
-
2024年全国结核病医院管理与创新研讨会(全国结核病医院院长会)
2024-12-06 苏州